1樓：匿名使用者
你好，我看了你的推斷過程，有一個地方有誤：tris-乙酸不代表tris與乙酸的比例是一比一，實際上配tae時，根據所需的ph值，tris與乙酸比例是2：1的。
所以1x ：0.04mol/l tris-乙酸=0.
04mol/ltris鹼以及0.02mol/l乙酸，相應地你就能算出是57.1ml冰乙酸了。
另外，你發現沒有，按照你的1x的配方edta是0.001mol/l,那麼乘以50為0.05mol/l，而50×配方中是0.
1mol/l。這兩種配方都是正確的：分子克隆附錄上面取的是0.
05mol/l，takara的技術手冊上用的是0.1mol/l，這個影響不大，主要是鰲合mg，抑制dnase活性。
希望能夠幫到你，有問題繼續交流！
2樓：愛是地獄
242g tris鹼
57.1ml 冰醋酸
100ml 0.05mol/ledta
稱下列試劑，1l燒杯
tris 242gna2edta.2h2o 37.2g然後加入800ml的去離子水，充分攪拌溶解。
加入57.1ml的醋酸，充分混勻。
加去離子水定容至1l，室溫儲存。
需要使用的時候，稀釋為1*的，
例如：需要使用200ml的1*tae，則量4ml的50*tae，196ml的去離子水，混勻即可。
3樓：匿名使用者
50*tae緩衝液成分：tris鹼、edta、冰醋酸
4樓：匿名使用者
242g tris57.1ml 冰醋酸 100ml 0.05mol/ledta
te tae緩衝液用途區別
5樓：匿名使用者
te緩衝液是tris +edta緩衝液，這種緩衝液我們一般用作溶解劑或保持劑，主要是調控ph，tae是一種電泳緩衝液，主要用於dna分子的電泳。 te組成濃度：10mm tris-hcl 1mm edta ph=8.
0 配製量：500ml 配製方法：量取下列溶液於500ml燒杯中 1m tris-hcl buffer ph=8.
0 5ml 0.5m edta ph=8.0 1ml 向燒杯中加入約400mldd h2o均勻混合；將溶液定容到500ml後，高溫高壓滅菌；室溫儲存.
tae是使用最廣泛的緩衝系統。其特點是超螺旋在其中電泳時更符合實際相對分子質量（tbe中電泳時測出的相對分子質量會大於實際分子質量），且雙鏈線狀dna在其中的遷移率較其他兩種緩衝液快約10%，電泳大於13kb的片段時用tae緩衝液將取得更好的分離效果，此外，**dn**段時也易用tae緩衝系統進行電泳。tae的缺點是緩衝容量小，長時間電泳（如過夜）不可選用，除非有迴圈裝置使兩極的緩衝液得到交換。
50×tae buffer 配製方法： 1. 稱量tris 242g，na2edta.
2h2o 37.2g 於1l燒杯中； 2.向燒杯中加入約800ml去離子水，充分攪拌均勻； 3加入57.
1ml的冰乙酸，充分溶解； 4.加去離子水定容至1l後，室溫儲存。
tae緩衝液
6樓：
按照242g tris鹼
57.1ml冰乙酸
100ml 0.5mol/l edta（ph8.0）是配置1l 50x的緩衝液
使用的時候取決於你的容器有多大，一般用一個2l的試劑瓶的話，就是40ml儲存液+水補滿到2l，然後拼命混勻就可以倒進電泳槽作電泳緩衝液或者配置agarose tae膠了
dna電泳緩衝液50×tae ,5×tbe中的50×、5×是什麼意思?
7樓：匿名使用者
50x就是稀釋50倍，得到正常濃度就是1x的緩衝液，就是你平時做緩衝液用的濃度。所以，5x就是稀釋5倍。。。。
8樓：
在生物學實驗中，一般來說：「工作液」（working solution）濃度是1×（如果有特殊說明需要x×，那就依說明為準）
大部分試劑（非現配現用），我們會配製高濃度的「母液」（stock solution），母液濃度是工作液的50倍，即50×，5倍，即5×
望採納哈！
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